Resistencia a los antimicrobianos (RAM)
Introducción
La resistencia a los antimicrobianos (RAM) se ha convertido en una preocupación cada vez más grave en los entornos sanitarios de todo el mundo desde 2019. El uso generalizado y el uso indebido de antibióticos, junto con el estancamiento en el desarrollo de nuevos agentes antimicrobianos, han contribuido significativamente al aumento de organismos multirresistentes (MDR) [1]. Además, el intercambio de sofisticados mecanismos de resistencia entre los patógenos ha limitado considerablemente las opciones de tratamiento6. Para ayudar a los profesionales sanitarios (PS) a desarrollar estrategias eficaces para las pruebas de sensibilidad a los antibióticos (PSA) y la secuenciación de genoma completo (whole genome sequencing, WGS), las tablas A y B presentan datos recientes [1][2][3] destacando las tendencias de la resistencia a los antimicrobianos en los sistemas hospitalarios, con especial atención a la vigilancia microbiana de los endoscopios gastrointestinales (GI) y el entorno asistencial.
Tabla A: Enfocada en la RAM emergente en la endoscopia GI*
Organismo de alto riesgo | Depósito | Relevancia para S&C de los endoscopios | Tasas de prevalencia |
|---|---|---|---|
Eschericha coli | Colonizador natural del tracto GI humano y frecuentemente recuperado de salidas de agua (p. ej., grifos y desagües). | Puede indicar fallos en la limpieza o desinfección manual, o posiblemente daños en el dispositivo. | CPRE: Alta GI superior (no CPRE): Media GI inferior: Baja |
Klebsiella pneumoniae | Colonizador natural del tracto GI humano y rara vez se recupera de superficies inanimadas. | Puede indicar fallos en la limpieza o desinfección manual, o posiblemente daños en el dispositivo. | CPRE: Alta GI superior (no CPRE): Media GI inferior: Baja |
Pseudomonas aeruginosa | Se recupera con frecuencia del agua o de superficies inanimadas y fómites (p. ej., desagües, barandillas de camas, lavabos) y, en ocasiones, coloniza el tracto GI humano. | Puede indicar contaminación del agua o fallos en la desinfección, el secado o el almacenamiento y la manipulación. | CPRE: Media GI superior (no CPRE): Media GI inferior: Baja |
Acinetobacter baumanii | Piel, superficies y fómites. Colonizador muy común en las superficies hospitalarias. Rara vez se recupera del tracto GI humano. | Puede indicar deficiencias en el almacenaje o secado, o contaminación de la muestra. | CPRE: Media GI superior (no CPRE): Media GI inferior: Baja |
*Datos a fecha de 2022
Tabla B: Aumento rápido de la RAM en entornos hospitalarios
Organismo | Resistencia | Relevancia para S&C de los endoscopios | Depósito |
|---|---|---|---|
Enterobacterales | Resistencia a los carbapenémicos y productora de betalactamasas de espectro extendido (BLEE) | Puede indicar fallos en la limpieza o desinfección manual, o posiblemente daños en el dispositivo. | Enterobacterales es un gran grupo de bacterias que se pueden recuperar del agua, el suelo y las superficies ambientales. Las muestras clínicas han aislado Enterobacterales de la nasofaringe, la piel, las membranas mucosas y el tracto GI. |
Acinetobacter spp. (En particular A. baumanii) | Resistencia al carbapenem | Puede indicar deficiencias en el almacenaje o secado, o contaminación de la muestra. | Piel, superficies y fómites. Colonizador muy común en las superficies hospitalarias. Rara vez se recupera del tracto GI humano. |
Candidozyma (Candida) auris | Resistencia a múltiples fármacos (MDR) | Puede indicar fallos en la limpieza o desinfección manual, o posiblemente daños en el dispositivo. Candida spp. también se han recuperado en raras ocasiones de los sistemas de agua de los hospitales. | Candidozyma (Candida) auris puede recuperarse del agua y del suelo. Candida es también un organismo comensal común que se encuentra en la piel, el tracto GI y el tracto genital femenino. |
Staphylococcus aureus | Resistencia a la meticilina | Puede indicar deficiencias en el almacenaje o secado, o contaminación de la muestra. | Piel, superficies y fómites. Colonizador muy común en las superficies hospitalarias. Rara vez se recupera del tracto GI humano. |
Enterococcus spp. | Resistencia a la vancomicina | Puede indicar fallos en el secado, la manipulación o el almacenaje del endoscopio. Posibles fallos en la limpieza manual o posible indicio de daños en el dispositivo. | Los enterococos colonizan en gran medida el tracto GI y biliar y, en menor medida, la piel, la cavidad oral, la ingle y los tractos genitales. También se pueden recuperar en el agua y el suelo. |
Pseudomonas aeruginosa | Resistencia a múltiples fármacos (MDR) | Puede indicar contaminación del agua o fallos en la desinfección, el secado o el almacenamiento y la manipulación. | Se recupera con frecuencia del agua o de superficies inanimadas y fómites (p. ej., desagües, barandillas de camas, lavabos) y, en ocasiones, coloniza el tracto GI humano. |
El rol de la vigilancia microbiana
El muestreo y el cultivo siguen siendo el método de referencia para evaluar el perfil microbiano de los endoscopios flexibles. Los aislados puros obtenidos de muestras cultivadas pueden analizarse mediante PSA y secuenciación de genoma completo (whole genome sequencing, WGS), lo que permite identificar con precisión los patrones de resistencia. Los especialistas en prevención de infecciones pueden utilizar la tabla A para evaluar qué tipos de procedimientos GI y endoscopios asociados presentan un mayor riesgo de contaminación o transmisión de RAM. Esta información respalda las investigaciones epidemiológicas específicas y las decisiones informadas sobre la gestión de antibióticos.
Depósitos medioambientales y formación de biopelículas
Los microorganismos patógenos recuperados de muestras clínicas suelen proceder de fuentes ambientales como el agua, las superficies y los suelos. Los equipos médicos, incluidos los endoscopios, pueden servir como vectores de transmisión. La capacidad de bacterias como Pseudomonas o Acinetobacter para producir biopelículas mejora su supervivencia en condiciones adversas, como la exposición a detergentes, desinfectantes, desecación y temperaturas extremas. Las biopelículas protegen a los microbios, permitiéndoles sobrevivir, intercambiar material genético y propagarse. Identificar el origen
de las bacterias es fundamental para orientar los esfuerzos de descontaminación y comprender los posibles fallos en las prácticas de reprocesado. La Tabla B resume los mecanismos de resistencia y los depósitos comunes según el Informe sobre amenazas antimicrobianas 2022 del CDC [4][5]. Los especialistas en prevención de infecciones pueden aprovechar esta información para perfeccionar los protocolos de limpieza y desinfección en las unidades de endoscopia y mejorar las auditorías en los espacios de reprocesado.
Referencias y otras lecturas
Antimicrobial Resistance Collaborators. “Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a systematic analysis.” Lancet (London, England) vol. 399,10325 (2022): 629-655. doi:10.1016/S0140-6736(21)02724-0.
Deb, Anasua et al. “Gastrointestinal Endoscopy-Associated Infections: Update on an Emerging Issue.” Digestive diseases and sciences vol. 67,5 (2022): 1718-1732. doi:10.1007/s10620-022-07441-8.
Balan, Gheorghe G et al. “Duodenoscope-associated infections: a review.” European journal of clinical microbiology & infectious diseases: official publication of the European Society of Clinical Microbiology vol. 38,12 (2019): 2205-2213. doi:10.1007/s10096-019-03671-3.
CDC. “Antimicrobial Resistance Threats in the United States, 2021-2022.” Antimicrobial Resistance, 16 July 2024, www.cdc.gov/antimicrobial-resistance/data-research/threats/update-2022.html. Visitado en enero de 2026.
CDC. “Antimicrobial Resistance Facts and Stats.” Antimicrobial Resistance, 22 Apr. 2024, www.cdc.gov/antimicrobial-resistance/data-research/facts-stats/index.html. Visitado en enero de 2026.
Peri AM et al. Antimicrobial treatment challenges in the era of carbapenem resistance. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease vol 94, 4 (2019): 413-425. https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2019.01.020. Visitado en enero de 2026.