Compreender as diferenças na recolha de amostras e criação de culturas de endoscópios flexíveis: Porque é que precisamos de uma abordagem unificada

O que é a recolha de amostras e criação de culturas?

A recolha de amostras e criação de culturas microbiológicas (S&C) é uma técnica de teste de vigilância em várias etapas utilizada para prevenir a transmissão de agentes infeciosos através da endoscopia [1]. O processo envolve a recolha de amostras dos canais do endoscópio e de áreas críticas do endoscópio, como a ponta distal dos duodenoscópios e, em seguida, a criação de culturas das amostras recolhidas para detetar qualquer contaminação ainda presente após o reprocessamento [2].

Porque é que a S&C é importante na prevenção e controlo de infeções?

A infeção pós-endoscopia em pacientes pode ocorrer como resultado do exame (infeção endógena causada pela translocação das bactérias do próprio paciente para outros locais do corpo) ou como resultado da entrada durante a utilização de dispositivos médicos contaminados (infeção exógena). Neste último caso, os desvios das instruções de utilização do fabricante ou dos protocolos de processamento recomendados podem desempenhar um papel importante.

Com a implementação de um programa de S&C precoce numa unidade de saúde, estes erros de reprocessamento podem ser evitados, ajudando a mitigar os riscos envolvidos no reprocessamento de dispositivos médicos reutilizáveis [4]. Além disso, quando os dados obtidos a partir da S&C de endoscópios são utilizados em todo o seu potencial, podem fornecer informações sobre potenciais deficiências do dispositivo, do equipamento (por exemplo, máquina de lavar/unidade de desinfeção de endoscópios [LDE]) ou do ambiente (por exemplo, qualidade da água) e, eventualmente, resultar em formação adicional do pessoal [3]. No entanto, é importante recordar a eficácia da própria abordagem de recolha de amostras, para garantir a deteção eficaz da contaminação microbiana em canais de endoscópios prontos a serem utilizados em pacientes [3].

Diretrizes atuais na Europa

As diretrizes combinadas de 2007 da European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) e da European Society of Gastroenterology Nurses and Associates (ESGENA) recomendam a criação de um programa de garantia de qualidade com vigilância microbiológica regular em todas as instalações clínicas – com base no dever de cuidado para com os pacientes. Recomenda-se um intervalo de três meses entre os testes de rotina [1].

Diferenças nos métodos de S&C

Embora a S&C de endoscópios seja comum em muitos países, as orientações e leis nacionais sobre higiene e controlo de infeções variam e baseiam-se em dados históricos a nível regional/nacional (consulte a tabela abaixo). Por conseguinte, uma norma de base de S&C poderia ajudar a minimizar o risco de infeções e facilitar a comparação de resultados de diferentes países [3].

Exemplo de diferenças nas práticas de S&C entre países

Recolha de amostras de países

Países Baixos [5]

França [6][7]

EUA [2]

Austrália [8]

Recolha de
amostras de fluido

Soro fisiológico esterilizado

Neutralizador

Água esterilizada DI ou RO

Água ou soro fisiológico esterilizado

Canais

Canal de instrumentos/aspiração

Todos os
canais

Canal de instrumentos (apenas duodenoscópios)

Todos os canais

Método de recolha de amostras para canal(ais)

FB

F ou FSF

FBF

FBF ou F

Método de recolha de amostras para pontas distais

Zaragatoa

FBF

Zaragatoa ou FBF

F

Neutralizador

Não

Sim

Sim

Não

Amostra

Separada

Agrupada

Agrupada

Agrupada

Criação de culturas

Países Baixos [5]

França [6][7]

EUA [2]

Austrália [8]

Método
laboratorial

Filtração por membrana (0,45 µm)

Filtração por membrana

Filtração ou centrifugação de toda a amostra

Centrifugação de toda a amostra agrupada para 1 ml

Placas de ágar

Sangue, R2A

PCA ou TSA

Sangue

Sangue, MacConkey

Condições de incubação

35 °C durante 72 horas

30 °C até 5
dias

35–37 °C durante 72 horas

-35 °C durante 48 horas até 5 dias

-28 °C durante 48 horas até 5 dias

DI=desionizada; RO=osmose reversa; F=lavar; FB=lavar e escovar; FBF=lavar e escovar e lavar; FSF=lavar-aspirar-lavar; R2A=Ágar 2A de Reasoner; PCA=ágar de contagem de placas; TSA=ágar tríptico de soja

Por que razão é importante uma abordagem unificada?

Na última década, os estudos sobre a transmissão de agentes patogénicos de endoscópios para pacientes geraram provas e conhecimentos que informam as melhores práticas [4]. No entanto, as diferenças nos métodos de S&C dificultam a comparação dos dados gerados em situações de surto e a determinação dos respetivos princípios fundamentais e críticos [3].

A criação de uma norma unificada irá permitir comparar os resultados e os níveis de contaminação entre países. Isto irá ajudar a estabelecer uma referência global para a norma de cuidados e segurança dos pacientes e, espera-se, otimizar os resultados dos pacientes.

Para obter mais informações sobre a implementação e gestão de um programa de S&C para endoscópios, estão disponíveis outras publicações da Olympus, tais como um livro branco sobre a implementação prática de um programa de S&C: Sugestões, truques e informações para a recolha de amostras e criação de culturas.

Fontes e leituras adicionais

  1. Beilenhoff U, Neumann CS, Rey JF, Biering, et al. ESGE-ESGENA guideline for quality assurance in reprocessing: microbiological surveillance testing in endoscopy. Endoscopy. 2007;39(2):175-81.

  2. FDA/CDC/ASM. Duodenoscope Surveillance Sampling and Culturing. Reducing the Risks of Infection. Disponível em: https://www.fda.gov/media/111081/download. Consultado setembro 2022.

  3. Alfa, M., & Singh, H. Contaminated flexible endoscopes: Review of impact of channel sampling methods on culture results and recommendations for root-cause analysis. Infection Control & Hospital Epidemiology. 2022;43(5):623-638.

  4. Olympus. Tips, Tricks and Insights for Implementation and Management of an Endoscope Sampling and Culturing Program. Disponível em: https://infectionprevention.olympus.com/en-us/scientific-evidence/publications/sampling-and-culturing. Consultado dezembro 2022.

  5. Rauwers, A. W., Voor In 't Holt, A. F., Buijs, J. G., et al. High prevalence rate of digestive tract bacteria in duodenoscopes: a nationwide study. Gut. 2018;67(9):1637–1645.

  6. INSTRUCTION N° DGOS/PF2/DGS/VVS1/PP3/2018/195 du 2 août 2018 relative à l’actualisation du traitement des endoscopes souples thermosensibles à canaux de type duodénoscope au sein des structures de soins. Disponível em: INSTRUCTION N°. DGOS/PF2/DGS/VVS1/PP3/2018/195 du 2 août 2018 relative à l’actualisation du traitement des endoscopes souples thermosensibles à canaux de type duodénoscope au sein des structures de soins - Légifrance (legifrance.gouv.fr). Consultado setembro 2022.

  7. Ministere des Affaires Sociales et de la Sante: Guide Technique. Traitement des endoscopes souples thermosensibles a canaux. 2016. Disponível em: https://www.preventioninfection.fr/document/guide-technique-traitement-des-endoscopes-souples-thermosensibles-a-canaux/. Consultado outubro 2022.

  8. Gastroenterological Society of Australia (GESA): Clinical Update - Infection Prevention and Control in Endoscopy 2021. Disponível em: https://www.genca.org/public/5/files/Nurses%20info/IPCE%202021_Feb2022update.pdf Consultado outubro 2022.